Профессионалам
409
Вирусный лейкоз кошек - эпидемиология и диагностика

Вирусный лейкоз кошек (ВЛК) – распространенное заболевание во многих странах мира: по-прежнему является серьезной угрозой

  • Ретровирус (оболочечный РНК-вирус) с интеграцией вирусного генома (провирус)
  • Может стать причиной смерти
  • Инкубационный период до 8 недель
  • Только кошки с виремией выделяют вирус1
  • Через слюну, выделения из носа, кал, мочу, молоко
  • В основном при контактах (например, вылизывание)
  • Встречается в 20 % домохозяйств, приютов и питомников при групповом содержании кошек
  • Распространенность в России 1520,7%3-5
  • Молодые кошки (<3 лет) более осприимчивы к заражению ВЛК
  • Групповое содержание кошек
  • Кошки, имеющие возможность свободного выгула

Последствия заражения ВЛК

Последствия заражения ВЛК

Диагностические тесты

Вакцинация и антитела, полученные от матери, не влияют на диагностику.

ДИАГНОСТИЧЕСКИЙ ТЕСТ ОБРАЗЦЫ ЧТО ОБНАРУЖИВАЮТ ИНТЕРПРЕТАЦИЯ
ИФА(экспресс-тест) Плазма, сыворотка крови,слюна, слезы Антиген (Ag) p27 Рекомендован скрининг Возможен ложноотрицательный результат
ПЦР Кровь, костный мозг, лимфоузлы, слюна, другие ткани Вирусная РНК провирусная ДНК Наиболее чувствительный тест Может быть обнаружена затухающая инфекция
ИФА Мазок крови, костный мозг Внутриклеточные антигены FeLV Подтверждающий тест Положительный результат в случае прогрессирующей инфекции

 

ВЛК – распространенное заболевание во многих странах мира: по-прежнему является серьезной угрозой

Вирусный лейкоз кошек в мире

Результаты многих исследований показывают, что заболевание представляет угрозу для кошек во всем мире, даже с учетом того, что распространенность заболевания может значительно различаться между регионами и странами (сводные статистические данные).

Распространенность ВЛК в Европе и Северной Америке часто составляет менее 4%, но в некоторых географических районах распространенность может превышать 20% (сводные статистические данные).

Сообщается, что распространенность ВЛК за последние 25 лет снизилась, вероятно, в результате реализации масштабных программ диагностики и усилий по проведению массовых вакцинаций.

В большинстве случаев вакцинация против ВЛК должна быть включена в стандартную программу вакцинации домашних кошек

 

2009 г. Руководство ABCD по профилактике и лечению вирусного лейкоза кошек

 

Консультативная группа рекомендует введение вакцин против ВЛК котятам […]

 

2013 г. Отчет консультативной группы AAFP по вакцинации кошек. Информационный бюллетень о заболеваниях, вызванных вирусом лейкоза кошек43

 

Диагностика вирусного лейкоза кошек

Диагностика вирусного лейкоза кошек

 

# Общие клинические нарушения, связанные с ВЛК: лимфома (средостения, периферических клеток и позвоночника); острый лейкоз; нерегенеративная (макроцитарная) анемия с эритроцитарной гипоплазией; иммуноопосредованная гемолитическая анемия; хронические или рецидивирующие инфекции, предполагающие иммуносупрессию; хронический гингивостоматит.

*В географических районах с низкой распространенностью ВЛК необходимо учитывать вероятность ложноположительных результатов: при низкой распространенности неизбежное небольшое количество ложноположительных результатов может превышать число истинно положительных.

**Регрессивные и прогрессирующие инфекции можно дифференцировать проведением повторного анализа на вирусный антиген в периферической крови. Кошки с регрессивной инфекцией обычно демонстрируют отрицательную реакцию в анализе на антигены к ВЛК по меньшей мере через 12 недель после инфицирования, в то время как кошки с прогрессирующей инфекцией сохраняют положительную реакцию на антигены к ВЛК.

Адаптировано из раздела ABCD FeLV diagnostic tool. www.abcdcatsvets.org

Таблица интерпретации результатов

 
  Прогрессирующая инфекция Регрессивная инфекция Нет инфекции Примечание
Что произошло? Персистирующая виремия (слабый иммунный ответ) Временная виремия (хороший иммунный ответ) Нет инфекции ВЛК  
Антиген p27 + ~ 6 недель после инфицирования Первоначально + Впоследствии -             - Положительная реакция на антиген p27 указывает на антигенемию; как правило, антигенемия приравнивается к виремии. Вакцинация и материнские антитела не влияют на результаты анализа на антиген p27
Провирусная ДНК – ПЦР в цельной крови              +++ Первоначально +++ Впоследствии +             - При сомнительных и положительных результатах анализа на p27 в сыворотке крови рекомендуется проводить ПЦР-анализы для обнаружения геноминтегрированного провируса в цельной крови. Истинно положительные на p27 образцы в анализе ПЦР будут давать очень высокие положительные результаты на провирус
Вирусная РНК – ОТ-ПЦР в крови/слюне                + Первоначально + Впоследствии -             - Обнаружение РНК ВЛК в образцах крови методом ОТ-ПЦР используется редко; его проведение рекомендуется при подозрении на очень ранней стадии инфекции, поскольку вирусная РНК может быть обнаружена в крови через 1 неделю после инфицирования
Выделение вируса              +++ Первоначально + Впоследствии -             - Только виремичные (антигенположительные) кошки выделяют ВЛК
Последствия

ВЛК-ассоциированное распространенное заболевание

• Неблагоприятный прогноз

• Источник инфекции

• Латентная инфекция («носители»)

• ВЛК-ассоциированное нечасто встречающееся заболевание

• Возможна реактивация в случае иммуносупрессии и присутствия потенциального источника инфекции

• Нет инфекции

• Вакцинация против ВЛК рекомендуется

Общие клинические нарушения, связанные с ВЛК

• Лимфома (средостения, периферических клеток и позвоночника)

• Острый лейкоз

• Нерегенеративная (макроцитарная) анемия с эритроцитарной гипоплазией

• Иммуноопосредованная гемолитическая анемия

• Хронические или рецидивирующие инфекции, предполагающие иммуносупрессию

• Хронический гингивостоматит

 

Для защиты от ВЛК без добавления адъюванта благодаря уникальной* технологии с применением вируса оспы канареек 45-48.

Подтверждено сравнительными исследованиями эффективности в условиях, имитирующих естественное инфицирование 45,46.

Оценка эффективности вакцины против ВЛК в исследовании с провокацией в форме контакта с природным источником в тяжелой форме

 

                                                                                    

4 группы котят SPF (свободные от специфических патогенов) в возрасте 8-9 недель: 18 инфицированных котят в качестве источника естественного инфицирования

  • 2 группы из 24 вакцинированных котят
  • 23 контрольных котенка

# Коэффициент эффективности – это доля кошек, защищенных вакцинацией, превышающая долю животных, обладающих естественной резистентностью.

Кроме того, Пуревакс FeLV имитирует естественную инфекцию, стимулируя тем самым клеточный иммунитет.

Вакцина ПУРЕВАКС FeLV – единственная* безадъювантная вакцина против ВЛК, позволяющая соблюдать международные принципы вакцинации

Котята

По возможности кошек следует вакцинировать безадъювантными вакцинами.

2016 Руководящие принципы WSAVA

Некоторые авторы рекомендуют применять безадъювантные вакцины с целью уменьшить местную воспалительную реакцию.

2013 Отчет консультативной группы по вакцинации кошек AAFP

Пуревакс - для защиты вашей кошки

  • Благодаря инновационным технологиям ПУРЕВАКС является серией безадъювантных вакцин для кошек с улучшенным профилем безопасности*45-48,52. Широкий диапазон и гибкость применения вакцин ПУРЕВАКС позволяют подобрать для каждого животного.
  • Индивидуальное решение, подходящее для определенного образа жизни кошки.
  • Клеточный и гуморальный иммунитет благодаря уникальной технологии с применением вируса оспы канареек** 45-48,52
  • Улучшенный профиль безопасности благодаря применению безадъювантной технологии* 53
  • Тестирование на ВЛК перед первой вакцинацией Пуревакс FeLV рекомендовано, но не обязательно. Перед ревакцинацией тестирование не требуется

Список литературы

  1. Burling AN, et al. J Am Vet Med Assoc. 2017;251(2):187-94.
  2. Ortega-Pacheco A, et al. J Feline Med Surg. 2014;16(6):460-4.
  3. Lickey AL, et al. J Zoo Wildl Med. 2005;36(1):121-3.
  4. Tique V, et al. Rev. Med. Vet. Zoot. 2009;56(2):85-94.
  5. De Almeida NR, etal. J Feline Med Surg. 2012;14(8):583-6.
  6. Coelho FM, et al. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. 2011;63(3),778-83.
  7. Novo SG, et al. Rev.Argent. Microbiol. 2016;48(4):293-7.
  8. Mora M, et al. J Wildl Dis. 2015;51(1):199-208.
  9. Sukura A, et al. Acta Vet Scand. 1992;33(1):9-14.
  10. Hellard E, et al. Prev Vet Med 2011;101(3-4):250-64.
  11. Montoya A, et al. Vet Parasitol. 2018;251:125-30.
  12. Alogninouwa T,et al. Rev. Méd. Vét 1992;143(6):553-5.
  13. Muchaamba F, et al. J S Afr Vet Assoc. 2014;85(1):1126.
  14. Oguzoglu TC, et al. Rev. Méd.Vét. 2013;164(11):511-16.
  15. Al-Kappany YM, et al. J Parasitol. 2011;97(2):256-8.
  16. Pavlova EV, et al. Can. J. Zool. 2015;93:849–55.
  17. Akhtardanesh B, et al. Res Vet Sci. 2010;89(2):306-10.
  18. Cong W, et al. Parasitol Res. 2016;115(1):217-23.
  19. Aminul Islam MD,et al. International Journal of Tropical Medicine 2012;7(3):98-102.
  20. Sukhumavasi W, et al. Vet Parasitol. 2012;188(1-2):25-30.
  21. Sivagurunathan A, et al. JFMS Open Rep. 2018;4(1).
  22. Maruyama S, et al. Microbiol Immunol. 2003;47(2):147-53.
  23. Lin JA,et al. J Vet Med Sci. 1995;57(1):161-3.
  24. Westman ME, et al. JFMS Open Rep. 2016;2(1).
  25. Luckman C, et al. JFMS Open Rep2017;3(2).
  26. Lutz H, et al. J Feline Med Surg 2015;17:570-82.
  27. Juvet F, et al. Vet Rec. 2011;168(13):352.
  28. Stavisky J, et al.Vet Rec. 2017;181(17):451.
  29. Turras, MT, et al. MSc 2014. http://recil.grupolusofona.pt/handle/10437/5417. [Last accessed06/01/2018].
  30. Ueland K, et al. Zentralbl Veterinarmed B. 1992;39(1):53-8.
  31. Brutus K, et al. MSc 2017. https://dspace.emu.ee/xmlui/handle/10492/3333. [Last accessed 06/01/2018].
  32. Garigliany M, et al. Vet Rec. 2016;178(2):45.
  33. Gleich SE,et al. J Feline Med Surg. 2009;11(12):985-92.
  34. Hofmann-Lehmann R, et al. Schweiz Arch Tierheilkd. 2018;160(2):95-105.
  35. Spada E, et al. J Feline Med Surg. 2012;14(6):369-77.
  36. Rypula K, et al. Berl Munch Tierarztl Wochenschr. 2014;127(3-4):163-5.
  37. Knotek Z, et al. Zentralbl Veterinarmed B. 1999;46(10):665-71.
  38. Firth CL, et al. JFMS Open Rep. 2015;1(2).
  39. Tozon N, et al. Acta Vet (Beogr) 2008;58(2-3),191-201.
  40. Mylonakis ME, et al. Ticks Tick Borne Dis. 2018;9(2):171-5.
  41. Attipa C,et al. Parasit Vectors. 2017;10(1):130.
  42. Lutz H, et al. J Feline Med Surg 2009;11:565-74.
  43. Scherk MA, et al. J Feline MedSurg 2013;15, Supplementary File.
  44. ABCD FeLV Diagnostic Tool. http://www.abcdcatsvets.org/. [Last accessed 06/01/2018].
  45. Sparkes AH, et al. J Vaccines Vaccin 2015;6:300.
  46. Grosenbaugh DA, et al. Biologicals. 2017;49:76-80.
  47. El Garch H, et al. InternJ Appl Res Vet Med 2006;4:100-8.
  48. Hofmann-Lehmann R, et al. Vaccine 2006;24:1087-94.
  49. Vaccination Guidelines Group,et al. J Small Anim Pract 2016;57:1-45.
  50. Hartmann K, et al. J Feline Med Surg 2015;17:606-13.
  51. Scherk MA, et al. J Feline MedSurg 2013;15:785-808.
  52. Poulet H, et al. Vaccine 2007;25:5606-12.
  53. Day M, et al.Vaccine 2007;25:4073-84.
  54. Бажибина Е.РВЖ. МДЖ. 2016;3:6-8.
  55. Гулюкина И. РВЖ. МДЖ. 2018;5:16-17.
Посмотрите также
315
Генетическая вариабельность калицивирусной инфекции кошек и её влияние на эффективность вакцинации
20 Июня 2019
Читать далее
496
Хламидиоз кошек: симптомы, анализы, вакцинация
17 Мая 2019
Читать далее
368
Постинъекционная фибросаркома и частота ее возникновения у кошек
20 Июня 2019
Читать далее
323
Связь воспаления и развития рака у кошек
20 Июня 2019
Читать далее
ИМЕЮТСЯ ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ. НЕОБХОДИМО ПОЛУЧИТЬ КОНСУЛЬТАЦИЮ СПЕЦИАЛИСТА